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18.5 : Développement des pousses - Biologie

18.5 : Développement des pousses - Biologie


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Objectif d'apprentissage

  • Définir les rôles du méristème apical des pousses, des primordiums des feuilles, des méristèmes intercalaires et des bourgeons axillaires dans le développement des pousses.
  • Expliquer le mécanisme du modèle ABCDE du développement floral.

Certaines parties de la plante, telles que les tiges et les racines, continuent de croître tout au long de la vie d'une plante : un phénomène appelé croissance indéterminée. D'autres parties de la plante, telles que les feuilles et les fleurs, présentent une croissance déterminée, qui cesse lorsqu'une partie de la plante atteint une taille particulière.

Développement de la tige et de la feuille

Par rapport aux racines, dans lesquelles la division cellulaire, l'allongement et la maturation se produisent dans des régions distinctes (voir Structure interne des racines), la croissance des tiges se produit dans plusieurs régions. La division cellulaire rapide se produit au niveau du méristème apical de la pousse de l'extrémité de la pousse. Certaines des cellules produites à partir de ces divisions donnent lieu à primordium de feuille, qui finissent par se transformer en feuilles. La division, l'élongation et la différenciation cellulaire (maturation) se produisent également au niveau des méristèmes intercalaires de entre-nœuds, les segments de tige entre nœuds, les points d'attache des feuilles. En conséquence, plusieurs entre-nœuds peuvent s'allonger simultanément. Dans certaines circonstances, les bourgeons axillaires de chaque nœud peuvent devenir actifs et produire des pousses axillaires, qui se ramifient à partir de la tige principale.

Développement de la fleur

Des changements dans l'expression des gènes peuvent entraîner le développement d'un méristème apical de pousse en un méristème floral, ce qui conduit à la floraison. Les Modèle ABCDE (modèle ABC) du développement floral dirige la formation de chacun des quatre verticilles d'une fleur complète. De l'extérieur vers l'intérieur, ces verticilles sont le calice (sépales), la corolle (pétales), l'androcée (étamines) et le gynécée (carpelles). (Voir Angiospermes pour plus de détails ; Figure (PageIndex{1}).) Chaque unité de ces verticilles (sépales, pétales, etc.) provient du développement et de l'évolution de la feuille.

Le modèle ABCDE fait référence à cinq groupes de gènes homéotiques, chacun représenté par une lettre. Gènes homéotiques sont ceux qui contrôlent le développement et l'organisation des parties du corps (plan corporel). Chacun des cinq groupes de gènes qui codent pour les facteurs de transcription (protéines nécessaires à l'expression des gènes), qui activent les gènes pour le développement de chaque verticille. L'analyse génétique des mutants en particulier ceux trouvés dans le Arabidopsis thaliana et dans le muflier (Muflier) soutiennent le modèle de floraison ABCDE. Chaque groupe de gènes a un rôle distinct comme suit (Figure (PageIndex{2})) :

  • Des gènes A sont nécessaires pour le développement des sépales et des pétales
  • Les gènes B sont nécessaires au développement des pétales et des étamines.
  • Le gène C est nécessaire au développement des étamines et des carpelles (y compris les ovules).
  • Les gènes D sont nécessaires au développement des ovules (partie des carpelles).
  • Les gènes E sont nécessaires pour produire l'un des verticilles floraux.

Ainsi, chaque verticille résulte de l'expression d'une combinaison de gènes différente comme suit :

  • L'expression des gènes A et E produit des sépales.
  • L'expression des gènes A, B et E produit des pétales.
  • L'expression des gènes B, C et E produit des étamines.
  • L'expression des gènes C et E produit des carpelles. Pour produire des ovules, qui sont considérés comme faisant partie des carpelles, les gènes D doivent également être exprimés (C+D+E = ovules).

En résumé, la formation d'une fleur nécessite une cascade d'activité génique séquentielle qui convertit progressivement une masse de cellules indifférenciées (le méristème apical de la pousse) en parties d'une fleur. Les gènes codent pour des facteurs de transcription qui agissent comme des commutateurs principaux, activant (ou désactivant) les gènes en aval qui placent finalement chaque partie de la fleur à son emplacement approprié.


Système de pousse de plante

Le système de pousses de la plante est une excroissance qui provient de la plumule de l'embryon de la graine au-dessus du sol. Le terme tirer est généralement interchangeable avec le terme tige, car il constitue le majeure partie du système de tournage.

La morphologie et la physiologie du système des pousses sont plus complexe que le système racinaire de l'usine. La tige principale est la axe vertical qui comprend deux segments, à savoir les nœuds et les entre-nœuds.

Nœuds sont les segments où les feuilles se fixent, et entre-nœuds sont les segments au milieu de deux nœuds. Un tournage est un très ramifié et la structure complexe de la plante qui ancrent les feuilles, les bourgeons, les fleurs et les fruits.

Contenu : Système de pousse de plante


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Fougères : le chaînon manquant dans l'évolution et le développement des pousses

<p>Le développement des pousses dans les plantes terrestres est un processus remarquablement complexe qui donne lieu à une extrême diversité de formes. Notre compréhension actuelle des mécanismes de développement des pousses provient presque entièrement d'études sur les angiospermes (plantes à fleurs), la lignée végétale la plus récemment divergente. Le développement des pousses chez les angiospermes est basé sur un méristème apical multicellulaire en couches qui produit des organes latéraux et/ou des méristèmes secondaires à partir de populations de cellules fondatrices à sa périphérie. En revanche, les pousses de plantes sans graines se développent soit à partir d'une seule initiale apicale, soit à partir d'une petite population de cellules apicales morphologiquement distinctes. Bien que des informations développementales et moléculaires deviennent disponibles pour les plantes non florifères, telles que la mousse modèle Physcomitrella patens, faire des comparaisons valides entre des lignées très divergentes est extrêmement difficile. En tant que groupe frère des plantes à graines, les monilophytes (fougères et apparentées) représentent un excellent point médian de comparaison phylogénétique pour débloquer l'évolution des mécanismes de développement des pousses, et les récents progrès techniques ont finalement rendu possible l'analyse transgénique dans le modèle émergent de fougère Ceratopteris richardii. Cette revue compare et contraste notre compréhension actuelle du développement des pousses dans différentes lignées de plantes terrestres dans le but de mettre en évidence le rôle potentiel que la fougère C. richardii pourrait jouer pour faire la lumière sur l'évolution des mécanismes de régulation génétique sous-jacents.</p>


18.5 : Développement des pousses - Biologie

Le développement végétal et animal a en commun :

  • Fertilisation d'un ovule 1N (haploïde) par un noyau de spermatozoïde 1N.
  • Division cellulaire et croissance aider à créer la forme de l'embryon.
  • Mécanismes moléculaires de détermination générer différents types de cellules.
  • Les cellules végétales ne migrent pas, comme le font bactéries ou cellules animales . La forme de la plante se forme en fonction du taux de division cellulaire et de la direction de l'allongement. Bien que les plantes développent trois systèmes tissulaires de base (dermiques, terrestres et vasculaires), elles ne dépendent pas de la gastrulation pour établir ce système en couches de tissus.
  • Le développement des plantes est continu. Les nouveaux organes végétaux sont formés tout au long de leur vie par des amas de cellules embryonnaires appelées méristème .
  • Les plantes ont une énorme plasticité de développement. Les parties de plantes perdues peuvent être régénérées par les méristèmes, et même des plantes entières peuvent être régénérées à partir de cellules individuelles. De plus, des facteurs environnementaux tels que la lumière et la température peuvent grandement influencer la forme globale de la plante.

Les ovule et noyaux polaires sont contenus dans le sac embryonnaire. Les noyaux de spermatozoïdes proviennent des grains de pollen.

Double fécondation.
Un noyau de spermatozoïde féconde l'ovule, générant un 2N zygote diploïde.
Un autre noyau de spermatozoïde féconde une cellule polaire avec deux noyaux 1N, générant un 3N endosperme triploïde , qui fournit des nutriments à l'embryon en développement.

L'embryogenèse végétale commence par une division cellulaire asymétrique, ce qui entraîne une plus petite apicale cellule (terminale) et une plus grande basal cellule. Cette première division asymétrique fournit la polarité à l'embryon. La plupart des embryons végétaux se développent à partir de la cellule apicale (terminale). Les suspenseur se développe à partir de la cellule basale. Le suspenseur ancre l'embryon à l'endosperme et sert de conduit nutritif pour l'embryon en développement.

Une division cellulaire supplémentaire conduit à la globulaire organiser. Les trois systèmes tissulaires de base (dermiques, terrestres et vasculaires) peuvent être reconnus à ce stade sur la base de modèles de division cellulaire caractéristiques. La forme globulaire de l'embryon est alors perdue au fur et à mesure que les cotylédons (feuilles embryonnaires) commencent à se former. La formation de deux cotylédons chez les dicotylédones donne à l'embryon un cœur-apparence en forme. Chez les monocotylédones, un seul cotylédon se forme.

Les cotylédons dressés peuvent donner à l'embryon une forme de torpille, et à ce stade, le suspenseur dégénère et le méristème apical de la pousse et le méristème apical de la chambre sont établis. Ces méristèmes donneront naissance aux structures adultes de la plante lors de la germination. La poursuite de la croissance des cotylédons entraîne les stades de la torpille et du bâton de marche. À ce stade, l'embryogenèse est arrêtée et la graine mature se dessèche et reste dormante jusqu'à la germination.

Dans les images suivantes, les descendants de la cellule apicale sont affichés en jaune et les descendants de la cellule basale sont affichés en rose.


de Chun-Ming Liu

Une grande quantité d'informations sur les modèles de division cellulaire et l'organogenèse au cours du développement embryonnaire a été accumulée sur la base d'études descriptives. Cependant, afin de révéler les mécanismes sous-jacents à la formation de motifs au cours de l'embryogenèse végétale, il est nécessaire de perturber expérimentalement ce processus. Deux approches, l'embryologie expérimentale et la dissection génétique, ont été utilisées à cette fin. Parce que les embryons végétaux ne sont pas facilement accessibles (ils se développent dans l'ovule du parent maternel), l'embryologie expérimentale s'est appuyée sur l'embryogenèse somatique - la formation d'embryons à partir de cellules adultes en culture tissulaire. Cependant, cette approche est problématique car une proportion élevée d'embryons anormaux se produisent assez souvent dans la culture tissulaire.

Au cours de la dernière décennie, de nombreux scientifiques ont tenté de disséquer génétiquement les mécanismes sous-jacents à la formation des modèles d'embryons végétaux. Cette approche repose sur l'isolement et la caractérisation de mutants défectueux dans ce processus, principalement en utilisant la plante modèle Arabidopsis thaliana.



Mutants ont été identifiés qui entraînent des changements dans l'établissement du schéma apico-basal (organisation des organes le long de l'axe apico-basal) et du schéma radial (organisation des trois systèmes tissulaires de base - dermique , sol , et vasculaire ).



Arabidopsis semis mutants ont été identifiés qui ont montré une perte ou une distorsion des régions de la racine, de l'hypocotyle ou des cotylédons. Ces défauts sont présumés résulter de défauts au cours de l'embryogenèse. Ces mutants ont ensuite été placés dans les grandes classes suivantes :

mutants dépourvus de segments corporels le long de l'axe apical-basal. Cette classe comprend gurke (gk), fackel (fk), monopterous (mp) et gnom (gn).

mutants à symétrie radiale perturbée - altérations du motif radial des couches tissulaires. Cette classe comprend knolle (kn) et keule (keu).

mutants avec organogenèse perturbée - ces mutants ont des formes globales grossièrement anormales, mais ont tous les éléments de motif le long des axes apico-basal et radial. Cette classe comprend fass (fs), knopf (knf) et mickey (mic).

Les images de ces mutants sont présentées ci-dessous, avec un type sauvage (wt) Arabidopsis semis pour comparaison.

de Jim Haseloff

Les mutants d'Arabidopsis présentant des défauts dans le schéma apico-basal peuvent être classés en fonction de la PARTIE manquante de la plantule, de la même manière que les mutants gap de Drosophile.


de Jim Haseloff

Le corps adulte des plantes vasculaires est le résultat de l'activité méristématique. Les méristèmes végétaux sont des centres de division cellulaire mitotique et sont composés d'un groupe de cellules souches auto-renouvelables indifférenciées à partir desquelles la plupart des structures végétales sont issues.

méristèmes apicaux sont situés aux extrémités de croissance de la plante adulte et produisent des tissus de racines et de pousses. Tirer les méristèmes apicaux (SAM) initier les feuilles pendant le développement végétatif, et inflorescence (IM) et floral méristèmes (FM) au cours du développement reproducteur.

Il s'agit d'une coupe longitudinale à travers un tirer le sommet. Comparez cette image au schéma ci-dessous.


Image de Ross Koning

Il s'agit d'une coupe longitudinale à travers un pointe de la racine. Comparez cette image au schéma ci-dessous.


image de Ross Koning

Comment sont organisés les méristèmes des pousses ?

Il y a environ 100 cellules dans la SAM de Arabidopsis thaliana. Ces cellules sont organisées de deux manières : les cellules sont organisées en zones radiales et également en couches.

Organisation radiale :
Les cellules qui se trouvent tout en haut du méristème se divisent rarement. Cette région est appelée la zone centrale. C'est l'emplacement des cellules souches indifférenciées auto-renouvelables. Autour de la zone centrale se trouve la zone périphérique. Le taux de division cellulaire dans la zone périphérique est supérieur à celui de la zone centrale. Les cellules de la zone périphérique donnent naissance à des cellules qui contribuent aux organes de la plante, notamment les feuilles, les méristèmes d'inflorescence et les méristèmes floraux. Au-dessous de la zone centrale se trouve une autre région de cellules à division rapide, appelée méristème des côtes. La division et l'allongement des cellules du méristème des côtes donnent naissance à la tige de la plante.

Organisation des couches :
La ou les couches superficielles des cellules (L1) ne se divisent qu'en formant des parois cellulaires anticlinales, c'est-à-dire que la division cellulaire est toujours perpendiculaire à la surface du méristème. En conséquence, les cellules de la couche L1 et leurs cellules filles restent toujours dans cette couche - toutes les cellules de la couche L1 sont liées par clonage. La ou les couches de cellules L2 sous les cellules L1 se comportent exactement de la même manière. Les cellules restantes (cellules L3 ou corpus) se divisent dans tous les plans et remplissent l'intérieur du méristème.

La figure ci-dessous montre un méristème apical de pousse d'inforescence (SAM) et deux méristèmes floraux adjacents (FM) de Arabidopsis thaliana. Sur la gauche se trouve la section optique originale de microscope confocal à balayage laser d'un tissu coloré à l'iodure de propidium pour montrer les noyaux. L'image centrale a été colorée pour montrer zonation radiale au sein du SAM. Les zone centrale (CZ) est affiché dans rouge , les zone périphérique (PZ) dans vert , et le méristème de côte (RM) dans bleu . L'image de droite a été colorée pour montrer couches liées au clonage. Les couche épidermique L1 est montré dans bleu , les couche L2 sous-épidermique est montré dans rose , et le Couche L3 , ou corpus est montré dans or . Les L1 et L2 ensemble sont appelés les tunique.




d'Elliot Meyerowitz

Tout au long de la vie de la plante, le méristème conserve sa taille et sa forme, malgré la division cellulaire et la différenciation cellulaire. Qu'est-ce qui régule l'équilibre entre la différenciation cellulaire et la division cellulaire ? Si la différenciation cellulaire était restreinte, le méristème augmenterait de taille. En revanche, si la division cellulaire était restreinte, la taille du méristème diminuerait.

Arabidopsis des mutants qui présentent une structure modifiée du méristème apical des pousses ont été identifiés.

Tirez sans méristème (stm) les mutants sont sans méristème des pousses - les mutations du gène STM bloquent complètement l'initiation de la SAM pendant l'embryogenèse, mais n'ont pas d'autres effets évidents sur le développement de l'embryon. L'image ci-dessous montre un semis de type sauvage à gauche et un semis mutant stm à ​​droite. Remarquez l'absence de SAM entre les cotylédons du mutant stm.


image de Kathy Barton

Wuschel les mutants ont une SAM plate. L'un des résultats de cette mutation est la formation de fleurs avec moins d'organes. Les wuschel la fleur mutante de droite n'a qu'une seule étamine et pas de pistil central. La fleur de type sauvage de gauche a 6 étamines et un pistil central.

image à gauche d'Elliot Meyerowitz
image à droite de Thomas Laux

Contrairement à tirer sans méristème et wuschel mutants, clavatales mutants ont des méristèmes de pousses beaucoup plus gros que les plantes de type sauvage, en raison d'une surprolifération de cellules dans la SAM. Ci-dessous, des coupes optiques à travers la SAM d'embryons matures colorés à l'iodure de propidium pour montrer les noyaux. Les clavata1 (clv1-4) l'embryon mutant à droite a une SAM plus grande avec plus de cellules que celle du type sauvage (à gauche).


images d'Elliot Meyerowitz

Un résultat de clavata mutations est la formation d'organes floraux supplémentaires à partir de méristèmes floraux. Sur la gauche est une fleur de type sauvage, et sur la droite, un clavata3 fleur mutante avec des pétales et des étamines supplémentaires et un pistil élargi.


images d'Elliot Meyerowitz


Le modificateur de protéine SUMO est essentiel pour le maintien du méristème des pousses d'Arabidopsis à des températures ambiantes plus chaudes

Les vagues de chaleur courtes (>37°C) sont extrêmement dommageables pour les plantes non acclimatées et leur capacité à se remettre du stress thermique est la clé de leur survie. Pour s'acclimater, la sous-famille HEAT SHOCK TRANSCRIPTION FACTOR A1 (HSFA1) active une réponse transcriptionnelle qui résout les dommages subis. En revanche, on sait peu de choses sur la façon dont les plantes s'acclimatent à des périodes chaudes soutenues non préjudiciables à 27-28°C. Les plantes répondent à cette condition par une réponse de thermomorphogenèse. De plus, HSFA1 est essentiel pour la survie des plantes pendant ces périodes chaudes. Nous constatons que SUMO, une modification protéique dont les niveaux de conjugués augmentent fortement pendant le stress thermique aigu chez les eucaryotes, est également critique pour la longévité des plantes pendant les périodes chaudes, en particulier pour le développement normal des méristèmes des pousses. Les SUMO ligases connues n'étaient pas indispensables pour supporter ces périodes chaudes, seules ou en combinaison. La thermolétalité n'a pas non plus été observée lorsque les plantes manquaient de certaines protéases SUMO ou lorsque la formation de la chaîne SUMO était bloquée. La thermo-résilience SUMO-dépendante était également indépendante du phénotype auto-immun des mutants SUMO. La thermotolérance acquise étant normale dans le sumo1/2 mutant knockdown, nos données révèlent ainsi un rôle pour SUMO dans l'acclimatation à la chaleur qui diffère de HSFA1 et SIZ1. Nous concluons que le SUMO est essentiel pour l'intégrité des méristèmes des pousses pendant les périodes chaudes.

Surligner Le modificateur de protéine SUMO régit le maintien des méristèmes des pousses chez Arabidopsis, permettant un développement soutenu des rosettes lorsque les plantes subissent une période chaude et non préjudiciable soutenue de 28 degrés Celsius.


Zéatine putative O-glucosyltransférase OscZOG1 régule le développement des racines et des pousses et la formation de caractères agronomiques chez le riz

The National Key Laboratory of Plant Molecular Genetics and National Center of Plant Gene Research (Shanghai), Institute of Plant Physiology & Ecology, Shanghai Institutes for Biological Sciences, Chinese Academy of Sciences, Shanghai, 200032 Chine

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Résumé

En tant que réaction omniprésente, la glucosylation contrôle la bioactivité des cytokinines dans la croissance et le développement des plantes. Ici, nous montrons que la manipulation génétique de la zéatine-O-la glucosylation régule la formation de traits agronomiques importants chez le riz en manipulant l'expression de OscZOG1 gène, codant pour une zéatine putative O-glucosyltransférase. Nous avons trouvé que OscZOG1 était préférentiellement exprimé dans les tissus méristématiques des pousses et des racines et les organes naissants. La croissance des racines latérales a été stimulée dans les lignées de surexpression, mais inhibée dans les lignées d'interférence ARN. Dans les pousses, renversement de OscZOG1 l'expression par interférence ARN a significativement amélioré le tallage, la ramification de la panicule, le nombre de grains par panicule et la taille des graines, qui sont des traits agronomiques importants pour le rendement en grains. En revanche, l'expression constitutive de OscZOG1 conduit à des effets négatifs sur la formation des caractères céréaliers avec une augmentation marquée des niveaux d'accumulation de cis-zéatine O-glucoside (cZOG) dans les plants de riz transgéniques. Dans cette étude, nos résultats démontrent la faisabilité d'améliorer les traits agronomiques déterminants pour le rendement, y compris le nombre de talles, les branches de la panicule, le nombre total de grains par panicule et le poids des grains en régulant à la baisse le niveau d'expression de OscZOG1. Nos résultats suggèrent que la modulation des niveaux de glucosylation des cytokinines peut fonctionner comme un commutateur de réglage fin dans la régulation de la formation de traits agronomiques chez le riz.

Des informations complémentaires peuvent être trouvées dans la version en ligne de cet article sur le site Web de l'éditeur.

Figure S1. Effets de la surexpression ou de l'interférence avec OscZOG1 expression sur la sénescence des feuilles de drapeau dans le riz

Figure S2. Relations phylogénétiques d'OscZOG1 et d'autres zéatine-O-glucosyltransférases

Figure S3. Modèles de localisation subcellulaire d'OscZOG1-GFP dans Arabidopsis protoplastes isolés des feuilles de 35S::OscZOG1-GFP plantes transgéniques

Figure S4. Effets de la surexpression ou de l'interférence avec OscZOG1 expression sur l'accumulation de cytokinines dans les plants de riz transgéniques

Remarque : L'éditeur n'est pas responsable du contenu ou de la fonctionnalité des informations fournies par les auteurs. Toute question (autre que le contenu manquant) doit être adressée à l'auteur correspondant pour l'article.


Méristèmes

Le sort d'une cellule dans le méristème de la pousse dépend de sa position
Le méristème de pousse des dicotylédones, qui donne naissance à la tige et aux feuilles, est composé de trois couches :
L1 (couche la plus externe, 1 cellule d'épaisseur)
L2 (se trouve sous L1, 1 cellule d'épaisseur)
L3 (Couche la plus interne)
L1 et L2 comprennent la tunique et se divisent par divisions anticlinales (perpendiculaires à la couche).
Les cellules L3 se divisent dans n'importe quel plan et constituent le corpus.
Le destin cellulaire a été déterminé en générant tissus chimériques.
Les chimères sont composées de cellules de différents gènes et sont fabriquées par traitement avec des radiations ou des produits chimiques (colchicine).
Chimères périclinales avoir une des trois couches marquée différemment.
Chez les angiospermes, L1 devient l'épiderme tandis que L2 et L3 produisent cortex et tissu vasculaire.
Occasionnellement, les cellules L1 ou L2 se divisent de manière périclinale, envahissent une nouvelle couche et adoptent le sort de la nouvelle couche (régulatrice).
Chimères mériclinales, résultat d'une irradiation ou d'une mobilisation d'un transposon, sont des plantes dont tout un secteur est marqué par un clone.
Ceux-ci ont été utilisés pour produire un carte du destin probabiliste chez le maïs et Arabidopsis.

Le développement du méristème dépend des signaux de la plante
Chez le maïs, le méristème apical donne naissance à un nombre de nœuds (16 -22) et à la panicule.
Les méristèmes isolés ne conservent pas la mémoire du nombre de nœuds produits et généreront un ensemble complet de nœuds.
Le nombre de nœuds est déterminé par interaction du méristème avec la plante.
Les semis de pois et les méristèmes iacutes lorsqu'ils sont coupés en deux se régulent en 2 méristèmes complets.
L'ablation d'une partie d'un méristème entraînera régénération d'un méristème complet.
L'élimination d'un méristème complet entraîne le développement d'un méristème naissant (à la base de la feuille).
De plus en plus les méristèmes inhibent la croissance des voisins.
Le positionnement des feuilles (phyllotaxie) implique inhibition latérale et produit souvent un motif hélicoïdal de feuilles sur une tige.

Les tissus racinaires sont produits à partir des méristèmes apicaux des racines par un schéma hautement stéréotypé de divisions cellulaires
Les méristèmes des racines ressemblent aux méristèmes des pousses mais présentent deux différences importantes :
1) le Chapeau de racine couvre le méristème racine (protection) &
2) pas de segment disposition comme on le voit avec le module nœud-entre-nœud-nœud.
La racine est mise en place tôt dans l'embryon au stade cardiaque tardif par un ensemble de cellules initiales.
Chaque colonne de cellules radiculaires provient d'une cellule spécifique du méristème via un schéma spécifique de division cellulaire.
Néanmoins, ce processus est sous contrôle réglementaire car l'ablation au laser des cellules radiculaires en développement donne un tissu normal.
Au centre du méristème racinaire se trouve un tranquille centre de cellules qui ne se divisent pas.
Il n'y a pas d'arrangement segmentaire évident de la racine comme on le voit avec le module nœud-entre-nœud-feuille de la pousse.


Recherche ouverte

Les données des puces à ADN ont été déposées dans le NCBI Gene Expression Omnibus (GEO https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo) sous le numéro d'accès GSE154508.

Nom de fichier La description
plb13228-sup-0001-TableS1.txt document en texte brut, 416,2 Ko Tableau S1. Gènes exprimés de manière différentielle au cours du développement des pousses apicales chez Pinus canariensis.

Remarque : L'éditeur n'est pas responsable du contenu ou de la fonctionnalité des informations fournies par les auteurs. Toute question (autre que le contenu manquant) doit être adressée à l'auteur correspondant pour l'article.


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Voir la vidéo: Du zygote à lembryon préimplantatoire (Janvier 2023).